淋巴細胞轉(zhuǎn)化試驗有形態(tài)計數(shù)法、MTT 法和同位素法三種。

MTT 法即四甲基偶氮唑鹽微量酶反應(yīng)比色法。MTT 是一種噻唑鹽，化學(xué)名3-（4，5-二甲基-2-噻唑）-2，5-二苯基溴化四唑，水溶液為黃橙色。小鼠脾細胞受到ConA 作用后發(fā)生增殖活化，其胞內(nèi)線粒體琥珀酸脫氫酶活性相應(yīng)升高，MTT 作為其底物參與反應(yīng)，形成藍色的甲臜（Formazan）顆粒沉積于細胞內(nèi)或細胞周圍，經(jīng)鹽酸─異丙醇溶解后為藍色溶液，可用酶標測定儀測定細胞培養(yǎng)物的OD 值，測定波長570 nm。根據(jù)OD 值的大小計算反應(yīng)體系中細胞增殖程度。

3H-TdR 摻入法：細胞增殖的基本條件或前提為細胞質(zhì)和細胞核的復(fù)制，這是正常細胞增殖過程缺一不可的前提。一般來說，一個細胞周期可大致分為四期，即G1 期、S期、G2 期和M期。其中S期為DNA合成期，主要功能活動為DNA合成。3H-TdR即（甲基-3H）胸腺嘧啶核苷（[3H-methyl]thymidine），是DNA合成的前體。加入細胞培養(yǎng)液中后被細胞攝取作為DNA合成的原料。細胞合成的DNA越多，則所摻入的3H-TdR就越多，因此，檢測所摻入的3H-TdR就可反映細胞增殖的程度。因該方法有同位素污染問題，故我們實習(xí)中仍用MTT法。

取一個滅菌的平皿，加入5 ml Hank's液。頸椎脫臼法處死小鼠，取脾臟，放入平皿中，在鋼網(wǎng)上研磨并過篩，制成細胞懸液。取出100 μl用于計數(shù)。將其余細胞懸液移入一離心管中，離心1500 rpm，7 min，（或1000 rpm，10  min）棄去上清，用RPMI1640 培養(yǎng)液稀釋，制成2.5×106 /ml的脾細胞懸液，然后加入ConA使每孔最終濃度為2 μg/ml，同時做不加ConA的陰性對照孔。

2.  將上述細胞懸液加入96孔平底培養(yǎng)板中，每孔0.1 ml。

3.  將培養(yǎng)板放入含有5 %CO2的37 ℃培養(yǎng)箱中培養(yǎng)48-72 小時，在培養(yǎng)結(jié)束前4-6 小時，于培養(yǎng)板各孔內(nèi)加入1 mg/mlMTT液，10 μl/孔。37 ℃培養(yǎng)6 小時。

4.  各孔內(nèi)加入0.01 M 鹽酸—異丙醇110 μl，30 分鐘內(nèi)（或加2 %SDS100 ul/孔，過夜）用酶標測定儀測OD 值，測定波長570 nm。